疾病小鼠模型系列之血友病篇


今年四月份,Sangamo和辉瑞公布了血友病A基因治疗1/2期临床中期数据,使血友病的基因疗法又向前推动了一步;早在2017年年底,辉瑞与Spark Therapeutics就公布了血友病B基因疗法SPK-9001的1/2期临床中期数据。此外,罕见病专业公司BioMarin也宣布今年下半年将会提交其血友病A基因疗法(valrox)的上市申请。

血友病为一组遗传性凝血功能障碍的出血性疾病,其共同的特征是活性凝血活酶生成障碍,凝血时间延长,终身具有轻微创伤后出血倾向,重症患者没有明显外伤也可发生“自发性”出血。根据凝血因子差异可分为由FVIII凝血因子功能异常导致的血友病A(hemophilia A,HA)与FIX凝血因子异常所致的血友病B(hemophilia B,HB)。流行病学调查结果显示,血友病A在男性人群中的发病率约为1/5000[1],血友病B的发病率约为1/25000[2];血友病A占总发病率的80%到85%。血友病作为一种血液性罕见病,患者极易出现躯体畸形,严重时甚至危及生命,然而尚无治愈的方法。作为一种单基因遗传性疾病,目前正在研究的基因治疗则具有治愈血友病的可能。在基因治疗的研究中,动物模型的应用是必不可少的基础支持条件

因此,建立与人类血友病生物学特性和临床表征相近的动物模型,对于血友病发病机制的研究以及新型药物的开发具有重要的意义。继前几期的肿瘤模型后,今天小编就给大家简单介绍一下小鼠血友病模型的发展历程及现状。


血友病哺乳动物模型的初现

第一例血友病模型形成于上世纪七八十年代,科学家发现狗因体内编码FIX因子的基因突变导致该凝血因子活性丧失,其发病机制及临床病理表现与人类HB极为类似。20世纪末,Monahan指出这种天然的血友病犬模型可以用于基因治疗的临床前动物试验[3]。同时,国内外科学家利用ES细胞打靶的方式获得了血友病HA小鼠模型和血友病HB小鼠模型。

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血友病大、小鼠模型的发展

随着基因编辑技术的不断发展,Nielsen在2014年运用ZFN锌指核酸酶技术构建了血友病大鼠模型,相比于血友病小鼠模型,其采血量及自发性出血等方面的问题得以改善[4]。随后,科学家相继运用该大鼠模型进行了血友病疾病等方面的深入研究。CRISPR-Cas9技术的应用极大的推动了基因功能的研究。科研工作者应用CRISPR-Cas9技术通过对小鼠F9因子第8外显子核心功能区进行定点编辑获得了小鼠血友病HB模型[5]

2016年,模拟病人突变的点突变小鼠F9Y381D构建成功,同时还成功制备了F9Y381S突变小鼠及第383 位氨基酸突变为终止密码子的敲除小鼠F9383STOP[6]。同年,F8因子敲除即HA小鼠模型也被成功构建[7]。血液病小鼠模型的成功构建极大的推动了血友病的研究。

Tab.1 血友病动物模型汇总[8]

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根据客户需求,南模生物自主研发了F8与F9基因敲除小鼠模型!

FVIII基因敲除小鼠模型

人的FVIII基因位于X染色体上,全长186kb,由26个外显子组成。临床研究表明,血友病A主要是由于FVIII基因的点突变、基因倒置、小段基因的缺失和插入造成的。南模生物自主研发的FVIII基因敲除小鼠是在小鼠胚胎干细胞(SCR012,来源于129S6/SVEV)上以同源重组方式造成内源FVIII基因序列部分缺失(16~19外显子),进而通过四倍体补偿技术获得完全胚胎干细胞来源的FVIII基因敲除小鼠,该小鼠进一步与C57BL/6J小鼠交配育种。

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Fig.2 FVIII基因敲除小鼠构建策略示意图;利用ES打靶的技术,用Neo基因替换FVIII基因的16-19外显子。

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Fig.3 FVIII基因敲除小鼠基因型鉴定

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Fig.4 A. FVIII基因敲除小鼠FVIII活性检测;雄性杂合子(-/y)和雌性纯合子(-/-)小鼠的FVIII活性仅为野生型(wt)小鼠的8%和10%,而雌性杂合子小鼠的活性为野生型小鼠的80%。B. FVIII基因敲除小鼠APTT(凝血活酶时间)检测;雌性杂合子小鼠的APTT时间比野生型小鼠的略有延长,而雄性杂合子(-/y)和雌性纯合子(-/-)小鼠的APTT值均大于120秒。

FVIII基因敲除小鼠是在整体动物水平研究血友病A发病机制和药物筛选的理想动物模型,该小鼠模型具有明确的血友病A症状。饲养时需注意同笼小鼠间争斗可能导致小鼠内出血甚至死亡,剪尾后必须采取及时的止血措施,防止敲除纯合子小鼠失血和死亡。


FIX基因敲除小鼠模型

人的FIX基因位于X染色体上,全长31kb,由8个外显子组成。南模生物通过CRISPR/Cas9技术编辑FIX基因,造成蛋白翻译移码突变并提前终止。

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Fig.5 F9因子敲除小鼠构建策略图;利用CRISPR基因编辑技术,针对小鼠F9基因exon8设计gRNAs,获得F9基因敲除小鼠模型。

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Fig.6 A. 肝组织中F9基因的表达;纯合突变小鼠的肝脏中F9因子的表达显著性降低。B.血浆中FIX蛋白的浓度,纯合突变小鼠的血浆中F9因子的浓度显著性降低。

FIX基因敲除小鼠是血友病B治疗药物的筛选和评价及血友病B基因治疗的理想动物模型。F9基因敲除纯合子小鼠可正常发育、存活、繁育。饲养时同样需要注意敲除纯合子本身出血的倾向性,放于单笼精心喂养。


如果您有血友病小鼠模型方面的需求,欢迎随时咨询!!!


参考文献:

1. Callan MB,Haskins ME, Wang P, et al. Successful phenotype improvement following gene therapy for severe hemophilia A in privately owned dogs [J]. PLoS One, 2016, 11(3): e0151800. 

2. World Federation of Hemophilia. Report on the annual global survey 2012 [M]. Montreal: WFH, 2013, 10.

3. Monahan PE, Samulski RJ, Tazelaar J, et al. Direct intramuscular injection with rAAV vectors results in sustained expression in a dog model of hemophilia [J]. Gene Ther, 1998, 5(1): 40-49.

4. Nielsen LN, Wiinberg B, Häger M, et al. A novel F8 -/- rat as a translational model of human hemophilia A [J]. J Thromb Haemost, 2014, 12(8):1274-82.

5. 汪启翰,怀聪,孙瑞林等. 利用CRISPR/Cas系统快速高效构建血友病乙小鼠模型[J]. 遗传,2015,37(11):143-148.

6. 关玉婷. CRISPR-Cas9技术在B型血友病小鼠模型构建及治疗的应用研究[D]. 上海:华东师范大学,2016.

7. 常士伟. 利用TALEN和CRISPR/Cas9技术构建甲型血友病小鼠模型[D]. 南京:南京师范大学,2016.

8. Denise ES, Timothy CN, Elizabeth M, et al. Animal Models of Hemophilia [J]. 

Prog Mol Biol Transl Sci, 2012; 105: 151–209.



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